1. 蓝藻数目在柱形培养器的不同取样口各取100μL 藻细胞,用去离子水稀释至10mL,在细胞流式仪计数,根据细胞流式仪测得的数据和计数小球,计算出藻细胞的浓度。2. 胞外多糖含量:采用蒽酮- 硫酸法(Fairbairn,1953)1)标准曲线的制作准确移...[继续阅读]
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1. 蓝藻数目在柱形培养器的不同取样口各取100μL 藻细胞,用去离子水稀释至10mL,在细胞流式仪计数,根据细胞流式仪测得的数据和计数小球,计算出藻细胞的浓度。2. 胞外多糖含量:采用蒽酮- 硫酸法(Fairbairn,1953)1)标准曲线的制作准确移...[继续阅读]
迄今为止,有关文献共报道的14 个伪空胞形成有关的基因(Walsby et al.,2004;Oliver et al.,1994;Chu et al.,2007;Jones etal.,1991;Halladay et al.,1993)中,gvpA 和gvpC 研究最为透彻。在大多数具有伪空胞的藻细胞中检测到了gvpA 基因具有多个拷贝。不同的藻细...[继续阅读]
本研究镜检发现,野外未经处理的样品1 内具有大量的细胞间隙[见图4-7(d)],而且伪空胞完整[见图4-7(g)],蓝藻群体在水面形成了水华;处理样品2 经1.0MPa 压力处理后,细胞群体内没有细胞间隙[见图4-7(e)],也没有发现完整的伪空胞[见图4-7(...[继续阅读]
微囊藻FACHB930 在柱形培养器中培养30 天,在取样口1 ~ 5处,大部分蓝藻呈单细胞状态,且处于细胞分裂期,蓝藻生物量随着蓝藻的上浮而增大,而在取样口6 处,显微镜检测到了蓝藻群体(见图4-4)。图4-4 蓝藻培养30 天的形态(图中数字代表取...[继续阅读]
大量蓝藻细胞由悬浮水体中的单细胞变为群体,并在水面形成水华,究其原因可能是随着蓝藻细胞的上浮,光照条件改善,更加有利于蓝藻的光合作用,从而产生更多的胞外多糖(Walsby,1998;Wallace,2000),使蓝藻细胞具有更强的黏滞性,更有利于...[继续阅读]
试验各性状均检测三次,取其平均数;利用t 测验检测同一性状的差异;用SPSS 软件进行性状之间的相关性分析。...[继续阅读]
GvpC 蛋白是由高度保守的33 个氨基酸残基重复序列单位组成(Walsby et al.,2004;Oliver et al.,1994;Chu et al.,2007;Jones etal.,1991)。蓝藻gvpC 基因的差异表现在保守重复单位数量上的差异。不同微囊藻株中GvpC 蛋白里保守重复的数量不同(Bentley etal...[继续阅读]
三种微囊藻的伪空胞的形态各异(见图3-2)。同一藻种内的伪空胞的长度不一,M. wesenbergii FACHB929 的伪空胞长度变化较大,最长的伪空胞高达1176.38nm,而最短的伪空胞仅有326.77nm。M. aeruginosa FACHB910 最长和最短的伪空胞长度差为301.98nm,M. a...[继续阅读]
内容摘要:伪空胞为蓝藻在水体中提供浮力,使其获得适宜的生长条件,最终导致蓝藻水华暴发。了解伪空胞的特征对控制蓝藻水华暴发有重要意义。本文简要回顾了蓝藻伪空胞自1895 年被Klebahn 发现到1965 年被正式命名的研究历程,目前...[继续阅读]
伪空胞一直被认为是蓝藻上浮的主要浮力提供者 (Oliver et al.,1984; Walsby,1988; Walsby, 1989; Kinsman et al., 1991; Walsby, 1994; Oliveret al., 2000; Bonnet et al., 2002; Cheng et al., 2006;许敏,2006;Klebahn,1895;Bowen et al.,1965;Walsby,1989;成慧敏等,2006;Walsby,1988),但是蓝...[继续阅读]